產(chǎn)品名稱：Simple Cloning T-vector(pSC-T)
產(chǎn)品編號(hào)與包裝規(guī)格：
| 編號(hào) | 產(chǎn)品名稱 | 規(guī)格 | 產(chǎn)品介紹 | 價(jià)格 |
| HKT001-01A | Simple Cloning T-vector(pSC-T) | 20次 | T載體 | 540 |
| HKT001-01B | 20次×5 | 2398 |
產(chǎn)品描述：
Simple Cloning T-vector（pSC-T）是一種 PCR 產(chǎn)物高效 TA 克隆的專用 T 載體，本載體消除了 PCR 產(chǎn)物插入?yún)^(qū)域兩側(cè)的 多克隆位點(diǎn)。
在 PCR 克隆構(gòu)建過程中，為了進(jìn)一步的克隆步驟，常會(huì) 在PCR 產(chǎn)物的兩端引入專門的酶切位點(diǎn)，如 T 載體上已帶有 相同的酶切位點(diǎn)，會(huì)對(duì)下一步的酶切連接帶來不利的影響。為 消 除 多 克 隆 酶 切 位 點(diǎn) 帶 來 的 負(fù) 作 用 ， Simple Cloning T- Vector去除了PCR 產(chǎn)物插入?yún)^(qū)域兩側(cè)所有的酶切位點(diǎn)。帶有酶 切位點(diǎn)的 PCR 產(chǎn)物克隆后進(jìn)行酶切時(shí)，T 載體上不會(huì)有相同 的酶切位點(diǎn)影響酶切反應(yīng)，可以大大提高酶切效率，增加亞 克隆成功率。多克隆位點(diǎn)的消除并不影響 β-半乳糖苷酶的正 常表達(dá)，PCR 產(chǎn)物克隆后仍可以利用 α-互補(bǔ)性進(jìn)行藍(lán)白斑篩 選，挑選陽性克隆。
由于本載體上消除了多克隆酶切位點(diǎn)，在 PCR 擴(kuò)增引物設(shè) 計(jì)時(shí)需要考慮導(dǎo)入合適的酶切位點(diǎn)。
產(chǎn)品特點(diǎn)：提供 2×快速連接系統(tǒng)（15 分鐘即可完成連接反應(yīng)）及 10×傳統(tǒng) 型連接系統(tǒng)（過夜連接可獲得最佳連接效果），具體使用說明見 后。
使用建議：
1）連接使用的 PCR 片段3' 端應(yīng)帶有 A 末端，如果是使用 pfu 等高保真聚合酶擴(kuò)增的不帶 A 末端的平末端片段，不可直 接用于進(jìn)行連接反應(yīng)。
2）克隆時(shí)使用的 Insert DNA 片段（PCR 產(chǎn)物）建議進(jìn)行 切膠回收純化，否則 PCR 產(chǎn)物中的短片段 DNA、殘留引物等 雜質(zhì)都會(huì)影響 TA 克隆效率。
3）轉(zhuǎn)化過程中建議使用 Control Insert DNA 做對(duì)照，以便 在實(shí)驗(yàn)出現(xiàn)問題時(shí)確定原因。
保存溫度：-20℃
Simple Cloning T-vector(pSC-T) 產(chǎn)品包裝（A包裝）：
質(zhì)量保證：
Control Insert 克隆后的白色菌落中，有90%以上含 有Insert DNA 片段。
克隆后，經(jīng)測(cè)序確認(rèn)''T''突出的存在。
操作方法：
1） 選擇合適的連接體系（詳細(xì)介紹見背面）。
2） 取10μL 加入至 100μL 感受態(tài)細(xì)胞中，用移液 槍吹打混合，冰上放置30 分鐘。
3） 將離心管置于 42℃水浴中，熱擊 60-90 秒，迅 速將離心管置于冰上，放置 2-3 分鐘。
4） 向每個(gè)離心管中加入 500μL 無菌不含抗生素的 LB 或SOC 培養(yǎng)基中，37℃搖床，150rpm 振蕩培養(yǎng) 45 分鐘，使質(zhì)粒上氨芐抗性基因表達(dá)，菌體復(fù)蘇。
5） 吸取200μL 已轉(zhuǎn)化的感受態(tài)細(xì)胞，加到含氨芐 青霉素的 LB 或SOC 固體平板上，用無菌涂布棒將細(xì) 胞均勻涂開，將平板置于 37℃培養(yǎng)箱里直至液體完全 吸收，倒置培養(yǎng) 12-16 小時(shí)。
6） PCR檢測(cè)，利用試劑盒自帶的高速PCR擴(kuò)增試 劑2×FastTaq Mast Mix直接進(jìn)行菌落PCR鑒定。
A、常規(guī)連接反應(yīng)體系（20μL）
| 組分 | 體積 |
| 10×Ligation Buffer | 2μL |
| pSC-Tvector（25 ng/μL） | 2μL |
| 目的PCR 片段/ Control Insert DNA | X μL/1 μL |
| T4 DNA Ligase | 1μL |
| ddH2O | 至 20μL |
反應(yīng)條件：
1）16℃保溫 3 小時(shí)以上或過夜。
2）在4℃保溫過夜，或室溫?cái)?shù)小時(shí)，但反應(yīng)效率較16℃過夜略低。 實(shí)踐表明連接反應(yīng)的溫度越低，達(dá)到理想連接效率所需時(shí)間越長，溫度 較高則所需時(shí)間較短。
注：10×Ligation Buffer融化時(shí)，如果出現(xiàn)少量沉淀屬正常現(xiàn)象，請(qǐng)于37℃ 溶解混勻后使用。
B、 快速連接反應(yīng)體系：
| 組分 | 體積 |
| 2×Quick Ligation Buffer | 10μL |
| pSC-Tvector（25 ng/μL） | 2μL |
| 目的PCR 片段/ Control Insert DNA | X μL/1 μL |
| T4 DNA Ligase | 1μL |
| ddH2O | 至 20μL |
反應(yīng)條件：
1）16℃ 或 25℃下，保溫15至30分鐘。
2）保溫5分鐘也能正常進(jìn)行反應(yīng)，但反應(yīng)效率略為 降低。25℃下進(jìn)行連接，其效果略差于16℃下連接效果。 而更高的溫度（>26℃）則較難形成環(huán)狀DNA。連接效率 偏低時(shí)，可適當(dāng)延長連接反應(yīng)時(shí)間，但過長的連接時(shí)間 （如數(shù)小時(shí)）連接效果反而會(huì)變差。一些較難連接的片 段（如大片段），請(qǐng)采用傳統(tǒng)型10× T4 DNA Ligation Buffer體系進(jìn)行嘗試。
